主要功能
? ULM-500具備多功能數據采集功能，可以連接多種PAR輻射傳感器和溫度、濕度傳感器。
? ULM-500帶兩個BNC接口，可以與各種型號的帶BNC接口的PAR傳感器連接使用。
? 通道1具有高時間分辨率，在1.2s內可以采集120個時間點，并顯示值，最小值與平均值。
? 通過Wincontrol-3軟件可以對光斑光進行連續快速檢測。
? 5檔自動切換光強敏感區間，使得可以測定高達99999的光強，也可以測定微弱到-0.1的光強。可以使用自動測定，也可以手動測定極短時間的光強變化。
? 另有一個接口可以連接JUNIOR-B葉夾進行連續監測。
? 可以用來進行光強的簡單測定，也可以作為連續測定的數據采集器。可以在單機模式下長時間（2個月或100天）連續記錄環境PAR變化情況，并可顯示數據變化圖。如果通過USB與電腦連接后，則記錄時間沒有限制。
應用領域
實時測定或連續監測環境PAR或水中PAR，進行生態學、環境研究學研究。
主要技術參數
? 設計：淺灰色塑料外殼，帶按鍵和背光LCD顯示屏，帶兩個BNCJ接口以及連接溫度和濕度傳感器的接口
? 尺寸：12×7.5×3.5 cm；
? 重量：210g（含4節AAA電池）
? 供電：4節AAA電池，或者USB供電
? 工作環境：35-85%RH（不結露）
? 時間分辨率：PAR#1:100次/秒，PAR#2與其它通道：5次/秒
? 監測時間：單機模式下，2個月天或100天；連接電腦時，WinControl-3軟件控制，無時間限制
? 存儲：可存儲50000行數據
? 接口：2個BNC接口（可設置從-50.0到-9999.間的校準系數），1個連接Junior-B接口，1個USB接口
? 顯示：5種高亮顯示模式（1：全顯示數據；2-4：大寫字母顯示兩個傳感器；5：可顯示包括值，最小值和平均值的通道1圖形），分辨率：0.1µmol m-2s-1
US-SQS系列PAR傳感器技術參數
l 設計：直徑3.7 mm的集電器與直徑2 mm的光纖連接
l 信號檢測：高穩定性硅光伏檢測器（藍色增強），經濾光后專門檢測380-710 nm波段
l 響應時間：25 ns
l 溫度系數：0.18%/K
l 角響應：從垂直軸到100°的誤差< 5%
l 方位角：從垂直軸到360°的誤差< 5%
l 供電：不需
l 工作溫度：-5℃ ~ 45℃
l 耐受水壓：2.8 m
選購指南
ULM-500可與各種帶BNC接口的PAR傳感器連接使用，不僅于下表列出的傳感器。此外，ULM-500也可與WALZ公司的2030-B葉夾聯用，方便的測量環境光強和（葉片）溫度。
圖片 | 介紹 | 備注 |
| MQS-B 包括Cosine（平面狀）傳感器、3 m長數據線和BNC接口。 | 適合實時或長期的環境光強測量。左圖中連接了兩個MQS-B傳感器。 |
| 2030-B 包括Cosine（平面狀）傳感器、熱電偶、葉夾、數據線和葉夾。 | 在空氣中測量光強和溫度。 |
| 2060-M 包括Cosine（平面狀）傳感器、熱電偶、葉夾、數據線。 | 在空氣中測量光強和溫度。 |
| US-SQS/L 包括Scalar傳感器（球狀）、3 m長數據線和BNC接口，可以直接與ULM-500連接，測量環境光強。 | 可在空氣中和水中測量。 |
| US-SQS/IB 包括Scalar傳感器（球狀）、3 m長數據線和BNC接口，并帶一個特制蓋子，適合與PAM-100或XE-PAM聯用。 它可以直接與ULM-500連接，測量水中（各種溶液皆可）PAR。 | 可作為PAM-100或XE-PAM的配件 |
| US-SQS/WB 包括Scalar傳感器（球狀）、3 m長數據線和BNC接口，并帶一個特制蓋子和放大器（適合弱光下測量），適合與多種PAM聯用。 它可以直接與ULM-500連接，測量水中（各種溶液皆可）PAR。 | 常作為PAM-100、XE-PAM、DUAL-PAM-100、WATER-PAM的配件，也可與PAM-2100/2500、MINI-PAM聯用。 |
| US-SQS/B 包括Scalar傳感器（球狀）、3 m長數據線和BNC接口，并帶一個特制蓋子和放大器（適合弱光下測量，帶電池），適合與PHYTO-PAM聯用。 它可以直接與ULM-500連接，測量水中（各種溶液皆可）PAR。 | 常作為PHYTO-PAM的配件。 |
參考文獻
數據來源：光合作用文獻Endnote數據庫，更新至2016年9月，文獻數量超過6000篇
原始數據來源：Google Scholar
1. Baer, S., et al. (2016). "Optimization of spectral light quality for growth and product formation in different microalgae using a continuous photobioreactor." Algal Research 14: 109-115.
2. Cartaxana, P., et al. (2016). "Light and O2 microenvironments in two contrasting diatom-dominated coastal sediments." MARINE ECOLOGY PROGRESS SERIES 545: 35-47.
3. Elgetti Brodersen, K., et al. (2016). "Nanoparticle-based measurements of pH and O2 dynamics in the rhizosphere of Zostera marina L.: effects of temperature elevation and light-dark transitions." Plant, Cell & Environment 39(7): 1619-1630.
4. Fuentes-Grünewald, C., et al. (2016). "Long-term dinoflagellate culture performance in a commercial photobioreactor: Amphidinium carterae case." Bioresource Technology 218: 533-540.
5. Goessling, J. W., et al. (2016). "Photo-Protection in the Centric Diatom Coscinodiscus granii is Not Controlled by Chloroplast High-Light Avoidance Movement." Frontiers in Marine Science 2(115).
6. Jeffryes, C., et al. (2016). "Energy conversion in an internally illuminated annular-plate airlift photobioreactor." Engineering in Life Sciences 16(4): 348-354.
7. Koren, K., et al. (2016). "Development of a rechargeable optical hydrogen peroxide sensor - sensor design and biological application." Analyst 141(14): 4332-4339.
8. Kottmeier, D. M., et al. (2016). "Acidification, not carbonation, is the major regulator of carbon fluxes in the coccolithophore Emiliania huxleyi." New Phytologist 211(1): 126-137.
9. Kottmeier, D. M., et al. (2016). "H+-driven increase in CO2 uptake and decrease in HCO3? uptake explain coccolithophores' acclimation responses to ocean acidification." Limnology and Oceanography: n/a-n/a.
10. Li, J., et al. (2016). "In situ study on photosynthetic characteristics of phytoplankton in the Yellow Sea and East China Sea in summer 2013." Journal of Marine Systems 160: 94-106.
11. Lichtenberg, M., et al. (2016). "Photosynthetic Acclimation of Symbiodinium in hospite Depends on Vertical Position in the Tissue of the Scleractinian Coral Montastrea curta." Frontiers in microbiology 7: 230.
12. Ni, G., et al. (2016). "Arctic Micromonas uses protein pools and non-photochemical quenching to cope with temperature restrictions on Photosystem II protein turnover." Photosynthesis Research: 1-18.
13. Rickelt, L. F., et al. (2016). "Fiber-Optic Probes for Small-Scale Measurements of Scalar Irradiance." Photochemistry and Photobiology 92(2): 331-342.
14. Schwerna, P., et al. (2016). "Quantification of oxygen production and respiration rates in mixotrophic ction of microalgae in non-stirred photobioreactors." Engineering in Life Sciences: n/a-n/a.
15. Trampe, E. C. L., et al. (2016). "In situ Dynamics of O(2), pH, Light, and Photosynthesis in Ikaite Tufa Columns (Ikka Fjord, Greenland)—A Unique Microbial Habitat." Frontiers in microbiology 7: 722.
16. Wolf, J., et al. (2016). "Multifactorial comparison of photobioreactor geometries in parallel microalgae ctions." Algal Research 15: 187-201.
17. Xie, X., et al. (2016). "Photorespiration participates in the assimilation of acetate in Chlorella sorokiniana under high light." New Phytologist 209(3): 987-998.
