2.配體固定化

以下是配體一般的偶聯流程。

2.1 將目標配體溶解在含有0.5 M NaCl的0.1 M NaHCO3，pH 8.3的偶聯緩沖液中。對于蛋白質配體，凝膠濃度為5 - 20 mg/ml。對于小配體，制作1 - 10µmol/ml凝膠。偶聯緩沖液的體積應與固定凝膠的體積相同。

2.2 稱取所需的粉末（1 g干粉提供約9 ? 12 ml的沉降填料）并將其懸浮在預冷的 1 mM HCl中（1 g 干粉使用20 ml預冷的1 mM HCl）。讓填料在低溫下膨脹2 - 3分鐘。

2.3 快速去除過濾裝置中的液體。

2.4 將洗凈吸干的凝膠轉移到偶聯緩沖液中。

2.5 漿液在4℃下混合過夜或在室溫下混合3-4小時。

2.6 用至少5 倍凝膠體積的偶聯緩沖液清洗凝膠。

2.7 將凝膠重新懸浮到相同體積的封閉溶液中，0.1 M Tris/HCl，pH 8.0 或1 M 乙醇胺 pH 8.0，持續2 - 3小時。

2.8 用5倍體積的0.1 M 0.1 M Tris/HCl + 1 M NaCl，pH 8.0洗滌凝膠，然后用5倍體積的0.1 M醋酸鹽緩沖液 + 1 M NaCl，pH 4.0洗滌凝膠。

2.9 使用前用工作/平衡緩沖液清洗凝膠。

3.固定化效率的一般考慮

3.1 pH

pH 8.3的緩沖液常用于蛋白質固定。然而偶聯pH值可在6-10之間進行優化以獲得最佳結果（例如，高偶聯產率和高配體活性）。

注意：配體溶解后要調節偶聯pH值。

3.2 偶聯方案

應避免使用含有氨基的溶液。

可以引入稀釋的某些有機溶劑以提高配體的溶解度。應事先測試此類溶劑的適用性。

3.3 鹽

偶聯緩沖液中鹽的存在可以提高固定效率。

3.4 基礎基質中的活化基團

對于某些配體或應用，基礎基質中的活化水平可能過高，偶聯配體的活性可能會降低。

在降低的pH值下偶聯可能會減少配體分子的連接點。它可以提高偶聯配體的活性。活化基團的受控水解，例如在添加配體前幾個小時用偶聯緩沖液孵育凝膠，也可以減少過度偶聯問題。

3.5 屏蔽剩余的活化配體

未與配體反應的活化基團應通過添加額外的含有pH 8 - 9伯胺的小分子（例如Tris或乙醇胺）來封端。

3.6 最終填料的洗滌

偶聯反應后需要將未連接或弱連接的配體WAN全洗掉。采用高pH值和低pH值交替的洗滌方法可以確保有效去除不需要的物質。

4.固定化親和填料的使用

配體偶聯填料可用于使用間歇攪拌罐模式或填充柱模式的純化。處理這種材料遵循與處理其他基于瓊脂糖基質相同的原則。

5.儲存

凍干的CNBr活化瓊脂糖色譜填料(CNBr-activated SepFast 4 HF)應在8℃下儲存。偶聯的濕填料應在防菌劑（例如20%乙醇）存在的情況下于4-8℃儲存。切勿凍存耦合填料。

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